КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 14-24-00022

НазваниеЭпигенетические механизмы регуляции работы эукариотического генома

РуководительРазин Сергей Владимирович, Доктор биологических наук

Организация финансирования, регион Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии гена Российской академии наук, г Москва

Период выполнения при поддержке РНФ 2014 г. - 2016 г.  , продлен на 2017 - 2018. Карточка проекта продления (ссылка)

Конкурс№2 - Конкурс 2014 года «Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований коллективами существующих научных лабораторий (кафедр)».

Область знания, основной код классификатора 04 - Биология и науки о жизни, 04-201 - Структурная, функциональная и эволюционная геномика

Ключевые словаэнхансер, промотор, хроматин, хроматиновый домен, активаторный хроматиновый комплекс, коммуникация между промотором и энхансером, глобиновые гены, доменная организация генома, тепловой шок, HP1альфа, репликативные вилки, фосфорилирование гистона H2AX

Код ГРНТИ34.15.25


СтатусУспешно завершен


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
Больше семидесяти лет прошло с момента, когда Конрад Уоддинтгтон ввел в употребление понятие эпигенетики – науки, изучающей стабильные и, в идеале, наследуемые изменения в экспрессии генов и фенотипе клеток, которые не связаны с изменениями первичной структуры ДНК. Классическое понятие «эпигенетического ландшафта» было призвано объяснить вариативность связей генотип-фенотип, например, в случае дифференцировки клеток. Сегодня можно с уверенностью говорить о том, что эпигенетика является одной из наиболее быстро развивающихся областей молекулярной биологии. За прошедшие десятилетия расширился как список факторов, участвующих в формировании «эпигенетического ландшафта» (метилирование ДНК, ковалентные и нековалентные модификации хроматина, некодирующие РНК, позиционирование хромосом, локусов, регуляторных элементов в ядре), так и список процессов/ситуаций, в которых эпигенетический фактор играет ключевую роль (развитие, дифференцировка клеток, клеточный ответ на стресс, клеточное старение, рак). Данный проект направлен на изучение эпигенетических механизмов, регулирующих процессы транскрипции и репликации ДНК у эукариотических организмов. В рамках проекта будут разрабатываться три основных направления: (1) изучение эпигенетических механизмов, контролирующих работу энхансеров, (2) изучение эпигенетических механизмов, контролирующих транскрипционный статус генома на доменном уровне, и (3) изучение эпигенетических механизмов, обеспечивающих защиту генома в условиях клеточного стресса. Общая стратегия проекта направлена на разработку направлений, по которым в лаборатории имеется хороший экспериментальный задел. В области изучения эпигенетических механизмов, контролирующих работу энхансеров, особый акцент будет сделан на характеристике механизмов, обеспечивающих перемещение удаленных энхансеров к контролируемым ими промоторам и последующее удержание промоторов и энхансеров в относительной близости друг от друга. Наши предыдущие результаты позволяют предположить, что во всех этих процессах важную роль играет изменение пространственной конфигурации достаточно больших хромосомных сегментов по ходу клеточной дифференцировки. В рамках предлагаемого проекта запланированы различные эксперименты, целью которых является доказательство данной точки зрения. Важной частью работы по изучению механизмов установления энхансер-промоторной коммуникации станет создание управляемого инженерного геномного локуса на основе домена бета-глобиновых генов человека в неэритроидной клеточной линии для изучения вклада диффузии и трэкинга энхансосомы в процесс энхансер-промоторной коммуникации. Подобная искусственная модельная система станет мощным инструментом в исследовании как кинетических характеристик коммуникации элементов генома, так и роли отдельных белковых ансамблей в этом процессе. Раскрытие механизма установления энхансер-промоторной коммуникации имеет системное значение как для фундаментальной науки, так и для ее прикладных аспектов. Бывшая в свое время классической доменная модель организации эукариотического генома оказалась недостаточной для объяснения большого круга экспериментальных наблюдений, демонстрирующих пластичность геномных доменов и существование в геноме протяженных участков, которые содержат перемежающиеся тканеспецифичные и постоянно экспрессирующиеся гены. Работы нашей лаборатории внесли значительный вклад в переосмысление модели доменной организации генома, которая теперь включает представления о существовании так называемых доменов открытого и закрытого типов, классическими примерами которых являются соответственно домены альфа- и бета-глобиновых генов теплокровных животных. Решающий вклад в спецификацию/функционирование доменов открытого и закрытого типов вносят, хотя и в разной степени, почти все известные эпигенетические факторы. Мы обратили внимание на то, что у рыб и амфибий альфа- и бета-глобиновые гены сосредоточены в общем домене. Одной из задач проекта является анализ эпигенетических регуляторных систем, контролирующих работу такого единого альфа/бета-глобинового домена Danio rerio, и сравнение этих регуляторных систем с хорошо изученными регуляторными системами сегрегированных доменов альфа- и бета-глобиновых генов теплокровных. Реализация этой части проекта позволит проследить эволюцию глобиновых доменов и раскрыть причины возникновения принципиально разных классов геномных доменов, известных как домены «открытого» и «закрытого» типов, т.е. решить важную системную задачу современной геномики. О том, что в клетках существует особая система защиты от стрессов, хорошо известно, в частности благодаря большому числу работ, посвященных изучению активации экспрессии ограниченного числа генов при тепловом стрессе и других стрессах. Механизмы активации экспрессии этих генов, равно как и функциональная роль белковых продуктов, хорошо изучены. Однако реакция клеток на стресс не сводится к активации экспрессии стресс-индуцируемых генов, примером которых являются хорошо известные гены теплового шока. В клетках, оказавшихся в условиях стресса, активируется ряд защитных механизмов, многие из которых работают на эпигенетическом уровне. Есть веские основания полагать, что масштабные изменения спектра транскрибируемых генов в условиях теплового стресса и при других стрессах также контролируются на эпигенетическом уровне посредством реконфигурации хроматиновых доменов. Хотя роль эпигенетических факторов в клеточном ответе на стресс очевидна, системного изучения процессов, происходящих на геномном уровне в условиях стресса, до сих пор не проводилось. Мы планируем сосредоточиться на изучении именно этих вопросов. В силу их малой изученности есть все основания полагать, что полученные данные внесут принципиальный вклад в существующие представления о механизмах клеточного ответа на стресс. Как и в предыдущих частях проекта, основные направления работы будут базироваться на результатах, полученных ранее в нашей лаборатории. Мы показали, что при тепловом стрессе происходит перераспределение в ядре хроматин-ассоциированных белков (например, белка HP1α из центромерных участков в другие хромосомные области). В настоящем проекте будет проверяться гипотеза о том, что переместившийся на плечи хромосом HP1α обеспечивает репрессию транскрипции значительного числа генов при стрессе. Кроме того, мы продемонстрировали, что при тепловом стрессе происходит остановка репликативнных вилок и формирование вокруг них доменов фосфорилированного гистона H2AX (γH2AX). В настоящем проекте будет проверяться гипотеза о том, что формирование этих доменов играет ключевую роль в защите репликативных вилок от коллапса.

Ожидаемые результаты
Экспериментальный проект направлен на решение ключевых вопросов современной молекулярной и клеточной биологии, которые находятся в фокусе внимания ведущих ученых, регулярно обсуждаются на наиболее важных международных симпозиумах и являются предметом обсуждения в многочисленных обзорных статьях, публикуемых в рейтинговых международных журналах. Учитывая тот факт, что предыдущие результаты работы нашей лаборатории, которые положены в основу всех трех частей заявляемого научного проекта, были опубликованы в ведущих международных журналах и вызвали широкий интерес научной общественности, можно утверждать, что и реализация заявляемого научного проекта приведет к получению результатов мирового уровня, которые будут опубликованы в ведущих международных журналах. Мы полагаем, что в результате реализации проекта: 1. Будет продемонстрировано, что способ укладки хроматиновой фибриллы в больших сегментах интерфазных хромосом играет ключевую роль в позиционировании регуляторных элементов генома. В этом случае агенты, влияющие на способ укладки хроматиновой фибриллы, будут оказывать существенное влияние на процесс энхансер-промоторной коммуникации. Помимо очевидного значения для фундаментальной науки, данный результат может оказать влияние и на направление ряда прикладных работ. В настоящее время для остановки экспрессии тех или иных генов используются воздействия, непосредственно направленные на вовлеченный ген (подавление экспрессии посредством РНК-интерференции, снижение уровня специфических транскрипционных факторов, конкуренция тех или иных агентов с транскрипционными факторами за связывание промоторов и т.д.). Результаты нашей работы могут показать принципиально иные пути подавления экспрессии генов посредством прерывания энхансер-промоторной коммуникации, что будет способствовать определению нового спектра мишеней для так называемых эпигенетических лекарственных препаратов (“epigenetics drugs”). 2. Будет охарактеризован вклад диффузии и трэкинга энхансосомы в процесс энхансер-промоторной коммуникации, будет охарактеризована зависимость эффективности трэкинга энхансосомы от расстояния между энхансером и промотором; планируется идентифицировать геномные элементы и/или особенности профилей модификации гистонов в хроматиновой фибрилле, препятствующие трэкингу энхансосомы. Вопрос о том, как именно устанавливается энхансер-промоторная коммуникация - посредством случайного события (диффузия) или посредством направленного перемещения вдоль хромосомы (трэкинг) - обсуждается учеными в течение десятилетий. Решение данного вопроса будет иметь системное значение для современной молекулярной биологии. Практическое значение данного вопроса, как и в предыдущем случае, определяется возможностью выявления новых перспективных мишеней для эпигенетических лекарственных препаратов. 3. Будут идентифицированы регуляторные элементы единого домена альфа/бета-глобиновых генов Danio rerio и охарактеризованы особенности субдоменной организации этого домена, существенные для обеспечения специфичной для стадий развития организма экспрессии определенных глобиновых генов. Будут охарактеризованы регуляторные механизмы, контролирующих экспрессию глобиновых генов на разных иерархических уровнях регуляции транскрипции - доменном и субдоменном. Будет решен вопрос о предпосылках и возможных механизмах возникновения геномных доменов открытого и закрытого типов, в границах которых экспрессия тканеспецифичных генов регулируется с помощью принципиально различных регуляторных систем. Полученные результаты внесут существенный вклад в развитии представлений об эволюции геномов и регуляторных систем транскрипции у эукариот. 4. Будут охарактеризованы эпигенетические механизмы, участвующие в клеточном ответе на стресс, в частности механизмы, обеспечивающие остановку транскрипции значительного числа генов в стрессовых условиях, и механизмы, обеспечивающие защиту остановленных в условиях стресса репликативных вилок. Следует сказать, что вопрос о влиянии теплового и других стрессов на репликативный аппарат эукариотической клетки практически не изучен. То же касается и механизмов репрессии транскрипции большой группы генов при тепловом шоке. В этой связи любые данные, полученные в ходе реализации данного проекта, будут представлять большой интерес для мировой науки. Новые знания о работе эпигенетических систем регуляции активности генома, которые будут получены в результате реализации проекта, будут способствовать разработке оригинальных стратегий подавления роста опухолей, в том числе посредством определения круга новых перспективных мишеней для химиотерапии. Раскрытие механизмов адаптации клеток к различным стрессам (в том числе тепловому стрессу и репликативному стрессу) будет способствовать разработке комплекса мер, минимизирующих эффекты таких стрессов на живые организмы. Основные результаты проекта будет опубликованы в рейтинговых международных журналах. в том числе будет опубликовано не менее 6 статей в журналах с импакт-факторами больше 5.0 (Plos Genetics, Nature Communications, Nucleic Acids Research, Cell Death and Differentiation, Journal of Cell Science, Molecular and Cellular Biology, Cell Cycle и др.)


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2014 году
Проведены эксперименты, направленные на изучение роли макроукладки хроматиновой фибриллы в организации активных хроматиновых компартментов. С использованием техники фиксации конформации хромосомы (3С) продемонстрировано, что помещение изолированных ядер эритроидных клеток мыши в гипотонический раствор, приводящее к декомпактизации хроматина и разрушению ядерных компартментов (тельца Кахаля, PML-тельца), сопровождается утратой пространственных ассоциаций между удаленными регуляторными элементами домена бета-глобиновых генов. Иначе говоря, продемонстрировано, что декомпактизация хроматиновой фибриллы сопровождается дезинтеграцией акиваторного хроматинового компартмента домена бета-глобиновых генов. С использованием того же экспериментального подхода (3С) продемонстрировано, что активаторный хроматиновый компартмент домена бета-глобиновых генов восстанавливается при повышении уровня макромолекулярного скопления, которое обеспечивали путем добавления полиэтиленгликоля к суспензии ядер в гипотоническом растворе. Учитывая то обстоятельство, что при добавлении агента, повышающего уровень макромолекулярного скопления, происходит восстановление исходного уровня конденсации хроматина, можно утверждать, что способ макроукладки хроматиновой фибриллы играет ключевую роль в обеспечении взаимного пространственного позиционирования регуляторных элементов, контролирующих экспрессию бета-глобиновых генов. С использованием процедуры 5С (протокол, базирующийся на технике фиксации конформации хромосомы, но позволяющий одновременно изучать уровень пространственной сближенности большого числа геномных элементов) изучена пространственная организация протяженного (2500 т.п.н.) сегмента хромосомы 14 кур, включающего домен альфа-глобиновых генов, в лимфоидных клетках, пролиферирующих эритроидных клетках и дифференцированых эритроидных клетках, экспрессирующих глобиновые гены. Продемонстрировано, что активация транскрипции глобиновых генов коррелирует с декомпактизацией топологически-ассоциированного домена, в границах которого находится кластер альфа-глобиновых генов. В части проекта, посвященной изучению доменной организации генома, проведено два цикла экспериментов, направленных на получение ответа на вопрос о том, сопровождается ли функциональная сегрегация доменов слитых α/β-глобиновых генов Danio rerio структурным обособлением стадиеспецифичных субдоменов. Изучена чувствительность к обработке ДНКазой I различных сегментов главного локуса глобиновых генов, который расположен на хромосоме 3 и содержит 13 α- и β-глобиновых генов, экспрессирующихся на “эмбрионально-личиночной” и “взрослой” стадиях развития организма. В качестве экспериментального объекта были использованы культивируемые фибробласты Danio rerio (ATCC №CRL-2298), в которых глобиновые гены заведомо не экспрессируются. Эксперименты проводили согласно стандартному протоколу, включающему обработку пермеабилизованных клеток возрастающими количествами ДНКазы I и последующий анализ представленности в полученных препаратах ДНК полноразмерных рестриктных фрагментов из анализируемых геномных областей. На основании сравнения динамики исчезновения полноразмерных рестриктных фрагментов по мере углубления нуклеазного гидролиза сделано заключение о том, что наибольшей чувствительностью к ДНКазе I отличается эмбрионально-личиночный сегмент домена. Соответственно, можно утверждать, что организация в хроматиновые структуры слитого домена α/β – глобиновых генов Danio rerio не является единообразной на протяжении всего домена даже в тех клетках, где глобиновые гены не экспрессируются. Результаты дополнительно проведенных экспериментов по анализу профилей модификаций гистонов в домене α/β – глобиновых генов Danio rerio позволяют полагать, что разная чувствительность “эмбрионально-личиночного” и “взрослого” субдоменов к перевариванию ДНКазой I в ядрах фибробластов является следствием предпочтительного привлечения репрессорного комплекса PRC1 к “взрослому” субдомену. Мы продемонстрировали, что распределение ассоциированной с репрессией комплексами PRC1/PRC2 посттрансляционной модификации гистона H3 (триметилирование Н3 по лизину 27) в границах домена не является равномерным. Триметилированный по позиции К27 гистон H3 предпочтительно представлен в субдомене, содержащем “взрослые” глобиновые гены. Наиболее убедительно наличие структурных субдоменов в главном локусе глобиновых генов Danio rerio продемонстрировано в экспериментах с эритроидными клетками. Проведенный с использованием техники иммунопреципитации хроматина анализ профилей распределения модифицированных гистонов показал, что в эмбриональных эритроцитах хроматин эмбрионально-личиночного субдомена главного локуса α/β – глобиновых генов обогащен активирующими модификациями гистонов (панацетилированные гистоны Н3 и H4), тогда как неактивные гены взрослого субдомена обогащены ассоциированной с репрессией комплексaми PRC1/PRC2 модификацией гистона H3 (H3K27me3). После начала экспрессии глобинов взрослого типа распределение модифицированных форм гистонов зеркально изменяется: активирующие модификации гистонов картируются в той части домена, где находятся «взрослые» гены, тогда как репрессирующие модификации картируются в эмбриональной и эмбрионально-личиночной частях домена. Таким образом, стадиеспецифичная активация и репрессия глобиновых генов в эритроидных клетках Danio rerio реализуется в контексте двух выраженных структурных (хроматиновых) субдоменов. Характер распределения модифицированных форм гистонов в главном локусе позволяет предполагать наличие специализированного геномного элемента, расположенного между субдоменами. Возможная функция этого регуляторного элемента состоит в стадиеспецифичном ограничении действия энхансера, а также в ограничении распространения как активирующих, так и репрессирующих модификаций гистонов на разных стадия развития. Наряду с главным локусом глобиновых генов в геноме Danio rerio присутствует также минорный локус глобиновых генов. Этот локус расположен на хромосоме 12 и содержит 4 глобиновых гена, два из которых экспрессируются на эмбриональной стадии и два – на личиночной стадии. Генов, экспрессирующихся в кроветворных тканях взрослого организма, в этом локусе нет. Мы провели анализ данного локуса с использованием тех же подходов, которые использовались при анализе главного локуса глобиновых генов. Существенного различия в чувствительности к ДНКазе I между генами эмбрионального и личиночного субдоменов выявлено не было. Активирующие и репрессирующие модификации гистонов оказались равномерно распределены на протяжении всего локуса. На основании этих результатов сделано заключение о том, что в минорном локусе глобиновых генов Danio rerio функциональная сегрегация домена на эмбриональный и личиночный субдомены не сопровождается структурным обособлением субдоменов. В части проекта, посвященной изучению механизмов, обеспечивающих защиту генома в условиях теплового и репликативного стрессов был охарактеризован полный спектр транскриптов, экспрессия которых активируется, либо подавляется в условиях теплового стресса. Проведен RNAseq-анализ транскриптома клеток HeLa, подвергнутых тепловому стрессу. Обнаружено более 300 дифференциально экспрессирующихся в условиях теплового стресса генов. Идентифицированы не изученные ранее микроРНК, экспрессия которых увеличивается в 70-99 раз в ответ на тепловой стресс. Продемонстрировано, что при тепловом стрессе понижается уровень экспрессии значительного числа генов, продукты которых участвуют в регуляции транскрипции, тогда как уровень экспрессии абсолютного большинства генов «домашнего хозяйства» остается неизменным. Проведен анализ динамики посттрансляционных модификаций гистонов в клетках человека, подвергнутых тепловому стрессу. Продемонстрировано, что уровень посттрансляционных модификаций гистонов, характерных для различных типов гетерохроматина, не меняется в результате теплового стресса. Показано, что тепловой стресс приводит к гипоацетилированию гистонов H3 и H4. Обнаружено, что стресс-индуцируемое гипоацетилирования гистонов H3 и H4 в клетках человека со сниженным уровнем экспрессии белка гетерохроматина 1α происходит с задержкой по времени по сравнению с клетками, в которых этот белок экспрессируется на нормальном уровне. Проанализирована универсальность продемонстрированного нами ранее феномена стресс-индуцируемого ареста репликации ДНК и сопутствующего этому фосфорилирования гистона H2AX. Для этого исследованы эффекты теплового стресса на репликацию ДНК раковых клеток человека (HeLa), трансформированных клеток (HEK293) и первичных фибробластов человека. Показано, что максимальные использованные значения теплового стресса (45ºС, 30 мин) приводят к аресту репликации ДНК во всех типах клеток человека. При этом репликативная активность клеток восстанавливается уже через 30 минут после их возвращения в нормальные физиологические условия. С помощью метода двойного иммуноокрашивания аналогов нуклеотидов на нитях ДНК мы продемонстрировали, что восстановление репликации после теплового стресса имеет постепенный характер и происходит, в основном, за счет продолжения работы предсуществовавших репликативных вилок. С помощью ингибиторного анализа и РНК-интерференции показано, что ассоциированное со стресс-индуцируемым арестом репликации фосфорилирование вариантного гистона H2AX в клетках HeLa осуществляется ДНК-зависимой протеинкиназой (DNA-PK). Подавление активности DNA-PK в клетках, находящихся в S-фазе клеточного цикла, приводило к тому, что после теплового стресса накапливались двунитевые разрывы ДНК и индуцировался каспаза-3/7-зависимый апоптоз. Те же эффекты наблюдали в отсутсвие ингибирования DNA-PK в клетках со сниженным уровнем экспрессии H2AX. Таким образом, получены убедительные свидетельства того, что фосфорилирование H2AX и образование протяженных доменов γH2AX необходимо для предотвращения коллапса репликации ДНК и обеспечения выживаемости клеток в условиях теплового стресса.

 

Публикации

1. Яровая О.В., Рубцов М., Юдинкова Е., Цфасман Т., Разин С.В., Васецкий Е.С. Dynamics of double strand breaks and chromosomal translocations Molecular Cancer, 13, 249 (год публикации - 2014) https://doi.org/10.1186/1476-4598-13-249


Аннотация результатов, полученных в 2015 году
- Продемонстрировано, что подавление экспрессии (деплеция) гистондеацетилазы HDAC1 приводит к усилению границ топологически-ассоциированных доменов (ТАД) и, как следствие, к более выраженной пространственной сегрегации ТАДов друг от друга. - Продемонстрировано, что повышение уровня ацетилирования хроматина в масштабе всего генома приводит к разрыхлению структуры хроматина на уровне ТАДов и их пространственных агломератов, что подтверждает выдвинутую нами ранее гипотезу о том, что уровень ацетилирования хроматина может напрямую влиять на степень компактизации генома. - Продемонстрировано, что белок Chriz не играет ключевой роли в поддержании границ топологических доменов в интерфазных хромосомах Drosophila melanogaster. Анализ топологии генома клеток Drosophila melanogaster на фоне деплеции белка Chriz показал, что обеднение по этому белку не приводит к значительному изменению силы границ ТАДов. - Идентифицированы регуляторные элементы главного локуса глобиновых генов Danio rerio и охарактеризована пространственная структура этого локуса в эритроидных клетках эмбрионального и взрослого типов. Продемонстрировано, что транскрипция глобиновых генов эмбрионального типа не требует привлечения к эмбриональной части главного локуса α/β-глобиновых генов консервативного эритроид-специфичного энхансера, расположенного перед локусом. - Раскрыты причины исключительно высокой чувствительности к генотоксическим стрессам клеток, находящихся на стадии ранней S-фазы. Продемонстрировано, что действие теплового стресса на клетки, находящиеся в S-фазе клеточного цикла, является комплексным: помимо кратковременного ареста репликации ДНК, тепловой стресс приводит к немедленному образованию одноцепочечных разрывов ДНК, а также к отсроченному образованию двуцепочечных разрывов ДНК. Причиной возникновения одноцепочечных разрывов ДНК при тепловом стрессе является индуцированное тепловым стрессом подавление активности ДНК-топоизомеразы I. В последующем одноцепочечные разрывы ДНК конвертируются в двуцепочечные разрывы в ходе процесса репликации ДНК. - Продемонстрировано, что образование двуцепочечных разрывов ДНК при тепловом стрессе клеток, находящихся в G1- и G2-фазах клеточного цикла, происходит в результате ингибирования активности бета-изоформы ДНК-топоизомеразы II.

 

Публикации

1. Golov AK, Gavrilov AA, Razin SV The Role of Crowding Forces in Juxtaposing β-Globin Gene Domain Remote Regulatory Elements in Mouse Erythroid Cells PLoS ONE, 10, 10, e0139855 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.1371/journal.pone.0139855

2. Ioudinkova E.S., Nefedochkina A.V., Ioarovaia O.V., Razin S.V. Detection of Complementary Transcripts for the Intergenic Region of the Chicken α-Globin Gene Domain Molecular Biology (Mosc), 49, 6, 899–903 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.1134/S0026893315060229

3. Sklyar IV, Pichugin AM, Razin SV, Vassetzky ES, Iarovaia OV Nuclear localization of translocation partners in differentiating B-cells Dokl Biochem Biophys, 464,1,312-314 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.1134/S1607672915050129

4. Величко А.К., Петрова Н.В., Разин С.В., Кантидзе О.Л. Mechanism of heat stress-induced cellular senescence elucidates the exclusive vulnerability of early S-phase cells to mild genotoxic stress. Nucleic Acids Research, 43, 13, 6309-6320 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.1093/nar/gkv573

5. Долгушин К.В., Юдинкова Е.С., Петрова Н.В., Разин С.В., Яровая О.В. Локус слитых a/b-глобиновых генов Danio rerio сегрегирован на структурные субдомены, экспрессирующиеся на разных стадиях развития Молекулярная биология, 49, 3, 498–506 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.7868/S0026898415030040

6. Иванова А.А., Величко А.К., Кантидзе О.Л., Разин С.В. Тепловой стресс приводит к формированию цитоплазматическиз гранул, содержащих белок HSC70 Доклады Академии Наук, 463, 2, 226-229 (год публикации - 2015)

7. Петрова Н.В., Величко А.К., Разин С.В., Кантидзе О.Л. Early S-phase cell hypersensitivity to heat stress. Cell Cycle, 15, 3, 337-344 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1080/15384101.2015.1127477

8. Разин С.В., Гаврилов А.А. Организация функциональных процессов в клеточном ядре: порядок, возникающий из беспорядка Вестник Московского Университета. Серия 16. биология, 3, 13-20 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.3103/S0096392515030104

9. Ulianov SV, Gavrilov AA, Razin SV Nuclear Compartments, Genome Folding, and Enhancer-Promoter Communication International Review of Cell and Molecular Biology, 315,183-244 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.1016/bs.ircmb.2014.11.004

10. Кантидзе О.Л., Величко А.К., Разин С.В. Heat Stress-Induced Transcriptional Repression Biochemistry (Mosc), 80, 8, 990-993 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.1134/S0006297915080039

11. Петрова Над.В., Величко А.К., Петрова Нат.В., Разин С.В., Кантидзе О.Л. Stress factor – dependent differences in molecular mechanisms of premature cell senescence. Biopolymers and Cell, 31, 5, 323-337 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.7124/bc.0008F4

12. Разин С.В., Гаврилов А.А., Ульянов С.В. Регуляторные элементы эукариотического генома, контролирующие транскрипцию Молекулярная биология, 49, 2, с212–223 (год публикации - 2015) https://doi.org/10.7868/S0026898415020123


Аннотация результатов, полученных в 2016 году
- Проанализированы профили разделения хромосом дрозофилы на топологически ассоциированные домены в культивируемых клетках, обработанных ингибитором гистондеацетилаз трихостатином А. Показано, что гиперацетилирование гистонов, происходящее в условиях подавления активности гистондеацетилаз приводит к компактизации ТАДов, падению частоты контактов между ними и к увеличению силы границ ТАДов. - Проанализировано влияние подавления экспрессии ДНК-связывающего белка Putzig на профили разделения хромосом дрозофилы на топологически ассоциированные домены. Показано, что белок Putzig, формирующий комплекс с Chriz и киназой JIL-1, и обогащённый в интер-ТАДах, не играет ключевой роли в установлении и поддержании границ ТАДов. - С использованием техники 5С, основанной на кросс-лигировании близкорасположенных фрагментов ДНК, изучено влияние активации транскрипции семенник-специфичных генов на пространственную организацию протяженных сегментов генома, в границах которых расположены данные гены Показано, что массивная активация семенник-специфичных генов в процессе сперматогенеза Drosophila melanogaster не приводит к значительной декомпактизации ТАДов, содержащих эти гены, и возникновению новых границ ТАДов. Вместе с тем, в мужских герминальных клетках (по сравнению с культивируемыми соматическими клетками) выявлена повышенная частота контактов на малых и средних геномных расстояниях, что свидетельствует о начале процессов компактизации хроматина в ходе дифференцировки этих клеток в зрелые сперматозоиды. - Охарактеризованы пространственная организация главного локуса α/β -глобиновых генов Danio rerio и профили ацетилирования гистонов в границах данного локуса в эритроцитах личинок и взрослых рыб Danio rerio. Показано, что эмбрионально-личиночный и «взрослый» сублокусы главного локуса глобиновых генов сегрегированы на уровне организации в хроматиновые домены и на уровне пространственной организации в ядре. Также показано, что эти сублокусы функционально изолированы. В частности, продемонстрировано, что лишь сублокус, содержащий глобиновые гены взрослого типа, регулируется консервативным эритроид-специфичным энхансером, находящимся перед главным локусом α/β -глобиновых генов. Идентифицирован CTCF-зависимый инсулятор, обеспечивающий функциональную изоляцию сублокусов главного локуса глобиновых генов Danio rerio. - Охарактеризованы промоторы генов минорного локуса α/β -глобиновых генов Danio rterio. Охарактеризованы уровни активации этих промоторов энхансером, расположенным перед локусом. - Всесторонне охарактеризована модельная система выбранная нами для исследования не связанного с разрывами ДНК фосфорилирования гистона H2AX – механический стресс, который заключался в кратковременной инкубации клеток в гипотоническом растворе. Продемонстрировано, что гипотонический стресс индуцирует фосфорилирование H2AX (образование γH2AX), которое не связано с образованием повреждений ДНК. С помощью РНК-интерференции и ингибиторного анализа показано, что киназой, ответственной за фосфорилирование H2AX при гипотоническом стрессе, является ATM. - С использованием электронной и флуоресцентной микроскопии продемонстрировано, что “мягкий” гипотонический стресс приводит к масштабным изменениям структуры хроматина, которые, тем не менее, являются обратимыми. Одновременно показано, что в условиях гипотонического стресса происходит остановка репликации и транскрипции ДНК. - Разработана оптогенетически управляемая система индукции преждевременного клеточного старения. Эта система основана на индукции одно- и/или двухцепочечных разрывов ДНК в клетках, находящихся в S-фазе клеточного цикла, с помощью активируемых светом токсичных флуоресцентных белков (фотосенсибилизаторов) tKR и miniSOG, таргетированных в хроматин. Впервые показано, что генетически-кодируемые фотосенсибилизаторы, направленные в хроматин, могут, в случае активации, вызывать образование разрывов ДНК. - Разработан алгоритм анализа изображений на основе бесплатного программного обеспечения с открытым кодом CellProfiler, позволяющий в автоматическом режиме анализировать большие объемы препаратов ДНК-комет. Разработан протокол модифицированного метода ДНК-комет и соответствующий алгоритм анализа изображений на основе CellProfiler, позволяющие анализировать повреждения ДНК с учетом стадии клеточного цикла. Разработанный подход был верифицирован: было показано, что его использование существенно увеличивает общую чувствительность метода ДНК-комет

 

Публикации

1. Величко А.К., Петрова Н.В., Разин С.В., Кантидзе О.Л. Сравнительная характеристика методов синхронизации нормальных и трансформированных клеток человека. Молекулярная биология, Т 51, В 1 (год публикации - 2017) https://doi.org/10.7868/S0026898416060203

2. Ковина А.П., Петрова Н.В., Разин С.В., Яровая О.В. Главный регуляторный элемент (mre) домена α/β-глобиновых генов danio rerio проявляет энхансерную активность по отношению к промоторам глобиновых генов эмбрионально-личиночного и взрослого субдоменов Молекулярная биология, т. 50, № 6, C. 1020-1029 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.7868/S0026898416060112

3. Лужин А.В., Величко А.К., Разин С.В., Кантидзе О.Л. Automated analysis of cell cycle phase-specific DNA damage reveals phase-specific differences in cell sensitivity to etoposide. Journal of Cellular Biochemistry, V 117, I 10, P 2209-2214 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1002/jcb.25615

4. Нефедочкина А.В., Петрова Н.В., Юдинкова Е.С., Ковина А.П., Яровая О.В., Разин С.В. Characterization of the enhancer element of the Danio rerio minor globin gene locus Histochemistry and Cell Biology, v. 145, p. 463-473 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1007/s00418-016-1413-z

5. Петрова Н.В., Лужин А.В., Серебровская Е.О., Рюмина А.П., Величко А.К., Разин С.В., Кантидзе О.Л. Inducing cellular senescence in vitro by using genetically encoded photosensitizers. Aging, V 8, I 10, P 1449-1462 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.18632/aging.101065

6. Пичугин А.В., Яровая О.В., Скляр И.В., Лакомб Г., Разин С.В., Фест Т., Липинский М., Васецкий Е.С. Intranuclear localization of transcription factories and immunoglobulin heavy chain gene alleles during human B-cell maturation Biopolymers and Cell, Vol. 32. N 3. P 179–183 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.7124/bc.00091C

7. Скляр И., Яровая О.В., Гаврилов А.А., Пичугин А., Жермини Д., Цфасман Т., Карон Г., Фест Т., Липинский М., Разин С.В., Васецкий Е.С. Distinct Patterns of Colocalization of the CCND1 and CMYC Genes With Their Potential Translocation Partner IGH at Successive Stages of B-Cell Differentiation Journal of Cellular Biochemistry, v. 117, № 7, p. 1506-1510 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1002/jcb.25516

8. Кантидзе О.Л., Величко А.К., Лужин А.В., Разин С.В. Повреждения ДНК при тепловом стрессе. Acta Naturae, Т 8, В 2, С 84-88 (год публикации - 2016)

9. Петрова Н.В., Величко А.К., Разин С.В., Кантидзе О.Л. Small molecule compounds that induce cellular senescence. Aging Cell, V 15, I 6, P 999-1017 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1111/acel.12518

10. Разин С.В., Васецкий Е.С. 3D genomics imposes evolution of the domain model of eukaryotic genome organization Chromosoma, - (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1007/s00412-016-0604-7

11. Разин С.В., Гаврилов А.А., Васецкий Е.С., Ульянов С.В. Topologically associating domains: gene warehouses adapted to serve transcriptional regulation Transcription, 26;7(3):84-90 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1080/21541264.2016.1181489

12. Ульянов С.В., Храмеева Е.К., Гаврилов А.А., Флямер И.М. Кос П., Михалева Е.А., Пенин А.А., Логачева М.Д., Имакаев М.В., Чертович А., Гельфанд М.С., Шевелев Ю.Я., Разин С.В. Механизмы укладки хроматиновой фибриллы в топологически ассоциированные домены Acta Naturae, спецвыпуск т. 2, стр 3 (год публикации - 2016)

13. - Биологи МГУ увидели причину старения клеток в тепловом шоке. LENTA.RU, 23.03.2016 (год публикации - )

14. - Биологи выяснили, что тепловой стресс вызывает клеточное старение. газета.ru, 23.03.2016 (год публикации - )

15. - Биологам МГУ удалось вызвать преждевременное старение клеток, Популярная Механика, 08.11.2016 (год публикации - )


Возможность практического использования результатов
не указано